AAV载体的特点
腺相关病毒(adeno-associated virus, AAV)是微小病毒科,依赖病毒属的单链DNA病毒, 其正负链各半,基因组大小 4.7kb。病毒颗粒结构为正二十面体,直径20-26nm,耐热,耐有机溶剂。AAV具有多种常见血清型,100多种病毒变种。
在存在辅助诸如腺病毒(Berns,1990;Muzyczka,1992;Berns和Giraud,1996)、疱疹病毒、牛痘病毒等条件下(Yakobson等,1989),AAV能复制产生子代病毒。在缺少病毒的情况下,AAV整合其基因组到人类19号染色体的一个特别位点,直到有辅助病毒将其从潜伏状态下拯救出来(Kotin等,1990)。但研究普遍认为,AAV以不整合的形式为主,整合率小于2%。AAV的位点特异性的整合能力、其自然缺陷及其免疫原性低使其成为理想的基因治疗载体变为可能。重组AAV(rAAV)载体能体外转导培养细胞以及体内不同组织,如肺(Flotte等,1993;Conrad等,1996;Halbert等,1997)、脑(Kaplitt等,1994)、肌肉(Xiao等,1996)、视网膜(Ali,1996;Flannery等1997)、中枢神经系统(Peel等,1997)和肝脏(Xiao等,1998)等。
病毒结构
AAV基因组是一个线性、单链DNA(ssDNA)分子,由4680个核苷酸构成,在每个末端含有一个145个碱基组成的末端重复序列(ITR)(Srivastava等,1983)。ITR序列折叠成发夹结构,是其DNA复制起始和包装重组AAV病毒颗粒所需的唯一已知顺式作用元件。ITR元件位于两个翻译开放阅读框(ORF)的两侧。左侧ORF(或rep基因)编码四个非结构蛋白质称为Rep78、68、52和40,对于病毒DNA复制和包装是关键性的。右侧的ORF(或cap基因)编码三个结构蛋白质VP1、VP2和VP3(Berns,1990;Muzyczka,1992;Berns和Giraud,1996)。
复制过程
DNA复制,VAI RNA基因生成一个小RNA转录物增进AAV capsid mRNA的翻译。
此繁琐过程的局限性阻止了rAAV广泛发展为基因治疗的。如上所述载体的生成总是导致载体的明显Ad污染,因此需要热处理和严格的纯化方法灭活和去除Ad病毒颗粒污染。尽管载体和包装质粒之间通常没有同源序列,但是经常产生野生型样有复制能力的AAV(rcAAV)(Allen等,1997;Wang等,1998)。已经进行了许多尝试改进r
AAV载体的包装效率。它们包括:发展表达一些或所有包装所需的AAV基因的细胞系(Yang等,1994;Clark等,1995;Tamayose等,1996;Inoue和Russell,198),构建Ad辅助质粒能够用来替代Ad感染(Matsu***a等,1998;Xiao等,1998b)和发展重组Ad携带r
AAV载体基因组(Gao等,1998)。
对肌肉、肝脏、神经组织等转导效率高
载体自身免疫原性低
长期表达
比较稳定,易于保存和运输
缺点:容量较小
安全性好不同血清型的组织嗜性
AAV2载体:泛嗜性;最早应用的
AAV载体。有效转导肌肉,肝脏,脑组织,对于视网膜的转导效率和表达水平良好
AAV1载体:明显的骨骼肌嗜性(包括心肌),神经组织也可以感染;
AAV5载体:视网膜、神经系统、关节滑膜嗜性、肺;
AAV8载体:明显肝嗜性,视网膜、神经组织也可以感染;
AAV9载体:心肌嗜性,可穿过血脑屏障;
免疫反应:先存免疫(如AAV2)、反复给药引起针对AAV的免疫反应
生物安全性
一般认为AAV病毒本身对人体不致病。一般AAV病毒载体的生物安全等级是BSL1。但是对于携带致病基因或有害因子基因的
AAV载体则应归于BSL2,应遵守以下操作注意事项:
注意事项
在相应的生物安全等级环境和要求下进行操作。
避免与制品直接接触(经伤口或不小心针刺注入、误食、大量吸入、粘膜接触等)。
在操作过程中不慎皮肤接触或溅入眼睛,立即用大量清水冲洗;
乙醇、乙醚、氯仿等有机溶剂无法灭活AAV病毒,因此酒精消毒对于去除AAV病毒沾染无效。
消毒可以采用的手段包括清水清洗、高压、强氧化性的消毒液(如巴斯消毒液)清消、强碱性液体浸泡等。